CC BY
70
качественная первичная опухоль кожи с эпи- телиальной и нейроэндокринной дифферен-
Таблица
Некоторые иммунофенотипические критерии дифференциальной диагностики РКМ, мелкоклеточного рака легкого (МКРЛ) и мелкоклеточной меланомы
СК 7 СК 20 TTF-1 NSE Vimentin HMB-45 S-100
МКРЛ + - / + + - - - +
РКМ — + — + - - -
Меланома - - - + + + / - +
Примечание: TTF-1 - тиреоидный транскрипционный фактор, NSE - нейронспецифическая энолаза.
цировкой. Опухолевые клетки обладают морфологическими, иммуногистохимически-ми и ультраструктурными признаками клеток Меркеля, однако прямая гистогенетическая связь не доказана [11].
Рак из клеток Меркеля - это агрессивная опухоль, а ее точная морфологическая диагностика возможна только при использовании иммуногистохимических методов.
Исследование поддержано грантом БелГУВКГ 041-07.
ЛИТЕРАТУРА
1. Галил-Оглы Г.А., Паклина О.В., Сергеев Ю.В. и др. Рак из клеток Меркеля // Архив патологии. - 2004. - № 3. - С. 50-53.
2. Allen P.J., Bowne W.B., Jaques D.P. et al. Merkel cell carcinoma: Prognosos and Treatment of patients from a single institution // J. of Clin. Oncol. - 2005. - Vol. 23, N 10. - P. 2300-2309.
4. Atlas of Tumor Pathology / Third Series. - Fascicle 14: Tumors of the Lymph Nodes and Spleen / Armed Forces Institute of Pathology. - Washington. - Electronic Fascicle. - Ver. 2.0. - 1998.
5. Bichakjian C.K., Lowe L., Lao C.D. et al. Merkel cell carcinoma: Critical review with guidelines for multidisciplinary management // Cancer. -2007. - Vol. 110, N 1 (July). - P. 1-12.
6. Koljionen V., Bohling T., Granhroth G. et al. Merkel cell carcinoma: a clinicopathological study of 34 patients // Eur. J. Surg. Oncol. -2003. - Vol. 29. - P. 607-610.
7. Konno A., Nagata M., Nanko H. Immunohisto-chemical diagnosis of a Merkel cell tumor in a dog // Vet. Pathol. - 1998. - Vol. 35. - P. 538540.
8. Leech S.N., Kolar A.J.O., Barrett P.D. et. al. Merkel cell carcinoma can be distinguished from metastatic small cell carcinoma using antibodies to cytokeratin 20 and thyroid transcription factor 1 // J. Clin. Pathol. - 2001. - Vol. 54. -P. 727-729.
9. Miller R.W., Rabkin C.S. Merkel cell carcinoma and melanoma: Etiological similarities and differences // Cancer Epidemiol., Biomarkers and Prev. - 1999. - Vol. 8. - P. 153-158.
10. Pectasides D., Pectasides M., Economopoulos T. Merkel cell cancer of the skin // Annals of Oncology. - 2006. - Vol. 17. - P. 1489-1495.
11. Pollheimer V.S., Bodo K., Pollheimer M.J. et al. Merkel cell carcinoma metastasizing to the kidney mimicking primary neuroendocrine renal cancer. Case report // APMIS. - 2007. -Vol. 115, N 6 (Jun). - P. 774-777.
12. World Health Organization Classification of Tumors Pathology and Genetics of Tumors of the Skin / Edited by Weedon D., Le Boit P., Burg G., Sarasin A. - Lyon, 2005. - 350 p.
УДК 616.916.5:616.5
АНТИБИОТИКОРЕЗИСТЕНТНОСТЬ ЭНТЕРОБАКТЕРИЙ ПРИ ГНОЙНОВОСПАЛИТЕЛЬНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЯХ КОЖИ И МЯГКИХ ТКАНЕЙ
$
© Жилина С.В., Миронов А.Ю., Поликарпова С.В.
Кафедра микробиологии, вирусологии и иммунологии Московской медицинской академии им. И.М. Сеченова, Москва;
*
городская клиническая больница № 15 им. О.М. Филатова Департамента здравоохранения Москвы, Москва
E-mail: [email protected]
Внутрибольничные штаммы энтеробактерий могут вызывать тяжёлые раневые инфекции. Наиболее часто при гнойно-воспалительных заболеваниях кожи и мягких тканей изолировались P. mirabilis, E. coli, E. cloacae и K. рпеитотае/рпеитотае. Мониторинг уровня антибиотикорезистентности энтеробактерий в отделении гнойной хирургии выявил тенденцию нарастания количества нечувствительных штаммов. За 20002007 г. г. наибольшее количество штаммов, нечувствительных к аминогликозидам, цефалоспоринам и ци-профлоксацину, встречалось среди видов P. mirabilis и K. pneumoniae/pneumoniae. Карбапенем-устойчивых штаммов не найдено. За исключением карбапенемов, наиболее активными антибактериальными препаратами в отношении энтеробактерий являются амикацин, цефтазидим и цефепим.
Ключевые слова: энтеробактерии, резистентность, гнойно-воспалительные заболевания, кожа и мягкие ткани.
ENTEROBACTERIACAE RESISTANCE IN PATIENTS WITH PYOINFLAMMATORY DISEASES OF
THE SKIN AND SOFT TISSUES Zhilina S.V., Mironov A. Yu., Polikarpova S.V.
Microbiology, Virology & Immunology Department of the I.M. Sechenov Moscow Medical Academy, Moscow;
O.M. Filatov Municipal Clinical Hospital N 15, Moscow The hospital-acquired Enterobacteriaceae can cause serious wound infections. P. mirabilis, E. coli, K. pneumoniae/pneumoniae and E. cloacae were most often isolated while studying pyoinflammatory diseases of the skin and soft tissues. While studying the level of Enterobacteria antibiotic resistance in the department of contaminated surgery, the growing number of the resistent strains was still revealed. During 2000-2007 the largest number of strains non-susceptible to aminoglycosides, cephalosporins and ciprofloxacin, occurred among P. mirabilis and K. pneumoniae/pneumoniae. Strains, non-susceptible to carbapenems were not found. Besides carbapenems, there are some more effective antibacterial agents against Enterobacteria. They are Amikacin, Ceftazidime and Cefepime.
Key words: Enterobacteriaceae, resistance, pyoinflammatory disease, skin and soft tissue.
Роль представителей семейства Enterobac-teriaceae в этиологии внебольничных гнойновоспалительных заболеваний (ГВЗ) кожи и мягких тканей незначительна. Из внебольничных инфекций этиологически значимую роль они играют при ИМП. В госпитальной среде они вызывают тяжёлые инфекции дыхательных путей, внутрибольничные ИМП, раневые и интраабдоминальные ГВЗ [1]. Это связано с элиминацией грамположительной микрофлоры из верхних дыхательных путей и с кожных покровов в условиях стационара и активная колонизация их грамотрицатель-ной микрофлорой. Среди грамотрицательных палочек при возникновении внутрибольнич-
ных ГВЗ ведущими патогенами являются энтеробактерии [1, 8, 9]. При любой локализации первичного очага возможна генерализация инфекции, вызванной представителями сем. Enterobacteriaceae, с развитием гнойносептического заболевания (ГСЗ) [1].
Рост устойчивости микроорганизмов к антимикробным препаратам отмечается на протяжении последних десятилетий во всём мире и является глобальной тенденцией. Возникновение антибиотикорезистентности является естественным биологическим ответом на использование антимикробных препаратов, которые создают селективное давление, способствующее отбору, выживанию и размноже-
нию резистентных штаммов микроорганизмов. Мониторинг уровня антибиотикорези-стентности ведущих патогенов в РФ отражает мировую тенденцию. Резистентность микробов, в том числе и энтеробактерий, широко варьирует. Разный уровень антибиотикорези-стентности отмечается не только в различных регионах. Существенные отличия могут быть зарегистрированы в пределах одного города и даже ЛПУ, в зависимости от профиля отделения [7, 9]. Уровень резистентности представителей сем. Enterobacteriaceae чаще всего отражает политику назначения антибиотиков в конкретном ЛПУ. Только данные локального мониторинга уровня антибиотикорези-стентности помогут в выборе адекватной эмпирической антибиоткотерапии [7]. Как и ОРИТ, отделение гнойной хирургии относится к числу отделений с высокой частотой применения антибиотиков и является зоной повышенного внимания в отношении селекции и распространения полирезистентных внутрибольничных патогенов.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Исследованы: мазки, пунктаты и биопта-ты ран от больных ГВЗ и ГСЗ различного ге-неза и локализации (трофические язвы, флегмоны, абсцессы и гангрены, остеомиелит, сепсис в стадии гнойных осложнений, осложнения термических травм и др. заболевания). Биоматериалы получены в период с 2000 года по 2007 год от пациентов, госпитализированных в отделение гнойной хирургии Городской клинической больницы № 15 им.
О.М. Филатова. Микробиологическое исследование включало изучение видового состава микрофлоры гнойного очага.
Выделение и идентификацию чистых культур микроорганизмов проводили по общепринятым отечественным и зарубежным методикам [2, 3, 11]. Идентификацию выделенных микроорганизмов проводили по морфологическим, тинкториальным, культуральным, ферментативным свойствам. Использовали тест-системы СТАФИтест16, НЕФЕРМ-тест 24, СТРЕПТОтест16, ЭНТЕРОтест16 производства "PLIVA-Lachema" (Чехия) [6].
Определение чувствительности к антибактериальным препаратам, а также контроль качества определения чувствительности про-
водили в соответствии с методическими указаниями МУК 4.2.1890-04 "Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам" (2004), а также руководствуясь стандартами Института клинических и лабораторных стандартов - (Clinical and Laboratory Standards Institute - CLSI, ранее - NCCLS) [12-15]. При характеристике микроорганизмов использовались общепринятые категории: чувствительные (Ч), умеренно резистентные (УР) и резистентные (Р). Для интегральной характеристики лекарственной устойчивости использовались термины "нечувствительные" или " устойчивые" штаммы, объединяющие умеренно резистентные и резистентные микроорганизмы. Этот показатель используется в исследованиях по антибиотикорезистентности, проводимых, например, Европейской системой по надзору за антибиотикорезистентностью (EARSS), а также в работах отечественных авторов [4, 10].
С 1999 года в бактериологической лаборатории ГКБ № 15 им. О.М. Филатова разрабатывается и постоянно модернизируется "Автоматизированное рабочее место микробиолога, эпидемиолога и химиотерапевта" на базе планшетного фотометра iEMS-Reader (фирма "TERMO-Electron", Финляндия). Автоматизацию обеспечивают 2 программы: Система микробиологического мониторинга "МИКРОБ" (СМММ и усовершенствованная версия СМММ-2) и "МИКРОБ-Автомат" [6, 5]. Использование банка данных программы " МИКРОБ-Автомат" способствовало более точной идентификации микробов с использованием коммерческих тест-систем для идентификации. Статистическую обработку и анализ данных проводили с помощью компьютерной программы "Система микробиологического мониторинга "МИКРОБ" [5]. Возможности этой программы позволяли проводить не только статистический анализ полученных результатов, но и эпидемиологический анализ с исключением из подсчёта микробов, одинаковых по идентификации и фенотипическому признаку антибиотикоре-зистентности, выделенных от одного и того же пациента. Исключение повторностей позволяет оценить истинный спектр микрофлоры отделения и получить достоверную картину антибиотикочувствительности [5].
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
За период с 2000 по 2007 гг. исследовано 9277 анализов от 6797 пациентов. Из исследования исключены повторно выделившиеся от пациента штаммы. Выделено 9107 культур в том числе 5565 грамположительных кокков и 3318 грамотрицательных палочек, из которых 2065 относятся к семейству Enterobacte-riaceae, и 1253 неферментирующих грамот-рицательных бактерий (НГОБ). Кроме того, 224 (2,4%) изолята представлены непатогенными коринебактериями, патогенными грибами, грамотрицательными кокками рода Neisseria, облигатными анаэробами, аэробными спороносными грамположительными палочками рода Bacillus. Выявлено, что приоритетными патогенами ГВЗ кожи и мягких тканей являются грамположительные кокки -61,1%. Среди грамположительных кокков ведущими патогенами являются S. aureus (37,8%) и S. pyogenes (9,3%). На долю гра-мотрицательных палочек приходится 36,4%, из них на энтеробактерии - 22,7%, на НГОБ -13,8% всех изолятов. Среди энтеробактерий наиболее часто высевались Proteus spp. (5,9%), Escherichia spp. (5,9%), Klebsiella spp.
100
BG
6G
4G
2G
G
Рис. 1. Динамика выделения P. mirabilis, нечувствительных (Р+УР) к аминогликозидам.
---------1----------1---------1----------1----------1---------1----------1--------
2GGG 2GG1 2GG2 2GG3 2GG4 2GG5 2GG6 2GG7
Гентамицин
(4%) и Enterobacter spp. (1,9%). Приоритетными патогенами ГВЗ кожи и мягких тканей среди энтеробактерий являются Proteus mira-bilis, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae subsp. pneumoniae. С 2005 года наблюдается тенденция роста высеваемости Enterobacter cloacae при ГВЗ кожи и мягких тканей. В 2003 году отмечена внутрибольничная вспышка ГВЗ, вызванных P. mirabilis.
Мониторинг устойчивости к антибактериальным препаратам среди энтеробактерий, лидирующих по частоте встречаемости при ГВЗ, отразил общую тенденцию нарастания количества нечувствительных (НЧ) штаммов.
За 2000-2007 годы наибольшее количество штаммов, нечувствительных к ами-ногликозидам, встречалось среди P. mirabilis и K. pneumonia/pneumoniae: к гентамицину НЧ штаммов до 60%, к амикацину НЧ штаммов до 40%. Количество НЧ E. coli в этот период не превышало 40% в отношении гента-мицина и 20% - амкацина. E. cloacae менее устойчив к аминогликозидам: за период
наблюдений не более 30% НЧ штаммов в отношении гентамицина и не более 20% штаммов НЧ к амикацину. Для E. cloacae тенденция к нарастанию НЧ штаммов практически отсутствует (рис. 1-4).
100 80 60 40 20 0
Рис. 2. Динамика выделения E. coli, нечувствительных (Р+УР) к аминогликозидам.
100 80 60 40 20 0
Рис. 3. Динамика выделения штаммов K. pneumoniae, нечувствительных (Р+УР) к аминоглико-зидам.
N / Ч_____
ХУ"
---------1----------1---------1----------1----------1---------1----------1--------
2000 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007
Гентамицин
Т-----------------1-----------------1----------------1-----------------1----------------1-----------------г
2000 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007
ш Амикацин
1GG
BG
6G
4G
2G
G
Рис. 4. Динамика выделения штаммов E. cloacae, нечувствительных (Р+УР) к аминогликози-дам.
Изучение динамики выделения штаммов, нечувствительных к цефалоспоринам II, III и IV поколений, также выявило более высокий процент НЧ штаммов P. mirabilis и K. pneumoniae/pneumoniae в сравнении с E. coli и E. cloacae. Мониторинг антибиотикорезистент-ности выявил годовые колебания относительного количества устойчивых и умеренноустойчивых штаммов всех энтеробактерий.
Наиболее выраженная тенденция к росту НЧ штаммов P. mirabilis отмечается в отношении цефтриаксона и цефотаксима (рис. 5).
В 2007 г. количество НЧ к цефтриаксону и цефотаксиму штаммов увеличилось в 5,1 и
1GG BG 6G 4G 2G G
2GGG 2GG1 2GG2 2GG3 2GG4 2GG5 2GG6 2GG7
і і цeфопeрaзон lwww-j цeфотaксим — цeфтриaксон
і і цeфтaзидим ......цєФєпим ------Линейный (цeфопeрaзон
------Линейный (цeфтриaксон) -------Лииєйиьій (цeфтaзидим) ------Линейный (цєФєпим)
Рис. 5. Динамика выделения штаммов P. mirabilis, нечувствительных (Р+УР) к цефалоспори-нам.
3,9 раза соответственно в сравнении с 2000 г. Тенденцию к нарастанию НЧ штаммов в отношении цефоперазона и цефепима можно считать умеренной, а в отношении цефтази-дима тенденция нарастания НЧ штаммов практически отсутствует.
На рис. 6 приведена динамика выделения НЧ штаммов K. pneumoniae/pneumoniae c 2000 по 2007 год. В 2000 году более 50% штаммов клебсиел этого вида НЧ к цефопе-разону, 40% - к цефотаксиму и цефотриаксо-ну и более 30% к цефтазидиму. К 2007 г. регистрируется умеренная тенденция увеличения количества НЧ штаммов клебсиелл в от-
2GGG-G1 2GG2-G3 2GG4-G5 2GG6-G7
- - Амиодцин
1GG
BG
2GGG 2GG1 2GG2 2GG3 2GG4 2GG5 2GG6 2GG7
I- ■ ■ -1 цефоперазон KVvVVvVI цефотаксим ЕШЙЗЙШ цефтриаксон
1 1 цефтазидим ШПППШШ цефепим Линейный (цефепим)
Линейный (цефоперазон) Линейный (цефотаксим) Линейный (цефтазидим)
Рис. 6. Динамика выделения штаммов K. pneumoniae/pneumoniae, нечувствительных (Р+УР) к цефалоспоринам.
1 ■ ■ ■ 1 цефоперазон IV\V\\V\1 цефотаксим цефтриаксон
1 1 цефтазидим Ill цефепим Линеиный (цефтазидим) Линейный (цефепим)
Линейный (цефоперазон) Линейный (цефтриаксон) Линейный (цефотаксим)
Рис. 7. Динамика выделения штаммов E. coli, нечувствительных (Р+УР) к цефалоспоринам.
2000-01_________________2002-03________________2004-05_________________2006-07
] цефоперазон цефотаксим кюиятаюя цефтриаксон
] цефтазидим .......цефепим ---------Линейный (цефотаксим)
Линейный (цефтазидим) -----------Линейный (цефепим) ---------Линейный (цефоперазон)
Рис. 8. Динамика выделения штаммов E. cloacae, нечувствительных (Р+УР) к цефалоспоринам.
ношении всех цефалоспоринов: примерно на зидима, и с 2003 г. по 2007 г. примерно на 3%
10% в отношении цефоперазона и цефтриак- для цефепима.
сона, почти на 20% для цефотаксима и цефта- Мониторинг уровня устойчивых и уме-
ренно-устойчивых штаммов E. coli выявило
незначительное увеличение НЧ штаммов с 2000 г. по 2007 г. (рис. 7). Отмечается небольшое увеличение доли НЧ штаммов для цефтриаксона. Выявлены годовые колебания штаммов, нечувствительных к цефоперазону, цефотаксиму, цефтазидиму и цефепиму. Тенденция к распространению НЧ штаммов слабо выражена.
Годовые колебания уровня НЧ штаммов E. cloacae и тенденции распространения НЧ штаммов представлены на рис. 8. В отношении всех цефалоспоринов, кроме цефтазиди-ма, отмечается тенденция к умеренному увеличению количества НЧ штаммов.
80 60 40 20 0
2000 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007
— ■в— P. mirabilis — -В— K. pneumoniae --Д--Е. coli —0—E. cloacae
Рис. 9. Динамика выделения штаммов энтеробактерий, нечувствительных (Р+УР) к ципро-флоксацину.
Таблица 1
Активность аминогликозидов в отношении энтеробактерий в 2007 году (% чувствительных штаммов)
Патоген амикацин гентамицин нетилмицин тобрамицин
P. mirabilis б2,1 50,0 81,5 б1,1
E. coli 83,б б3,8 б3,0 42,1
K. pneumoniae б0,3 51,2 31,8 32,1
E. cloacae 85,0 87,5 90,9 не исследовали
Таблица 2
Активность цефалоспоринов и ципрофлоксацина в отношении энтеробактерий в 2007 году ____________________________(% чувствительных штаммов)___________________________
Патоген ЦПР ЦТК ЦРО ЦАЗ ЦЕФ ЦИПР
P. mirabilis 52,б 55,2 50,0 82,5 7б,5 б3,3
E. coli б8,5 70,7 б2,1 77,0 81,б 54,8
K. pneumoniae 3б,4 39,4 48,4 49,2 5б,1 44,8
E. cloacae б1,9 50,0 3б,4 57,1 бб,7 б9,б
Сокращения: ЦПР - цефоперазон, ЦТК - цефотаксим, ЦРО - цефтриаксон, ЦАЗ - цефтазидим, ЦЕФ - цефепим, ЦИПР -ципрофлоксацин.
---------е—
. -и- - - __
У"
,0------------
Годовые колебания количества штаммов энтеробактерий, нечувствительных к ципро-флоксацину представлены на рис. 9. Тенденция к нарастанию доли нечувствительных микроорганизмов прослеживается в отношении всех микробов. За период наблюдений доля НЧ штаммов P. mirabilis увеличилась более чем на 20% и составила 36,7%, доля НЧ K. pneumonia/pneumonia - почти на 30% и составила 55,3%, доля НЧ E. coli - на 25% и составила 45,2 %, доля E. cloacae - на 12,5% и составила 23,3%.
Учитывая тенденцию к нарастанию доли НЧ штаммов среди всех основных патогенов ГВЗ кожи и мягких тканей, необходимо рассмотреть уровень активности наиболее часто используемых антибиотиков в отношении энтеробактерий в 2007 г. Данные локального мониторинга могут сыграть важную роль при назначении адекватной эмпирической антибактериальной терапии.
Из аминогликозидов наиболее активным в отношении энтеробактерий является амика-цин (табл. 1). Он активен в отношении 83,6% штаммов E. coli и 85% штаммов E. cloacae, а также в отношении 62,1% штаммов P. mirabi-lis и 60,3% штаммов K. pneumoniae/pneumoniae. Нетилмицин активен для 90,9% штаммов E. cloacae и 81% P. mirabilis, но демонстрирует низкую активность в отношении K. pneumoniae/pneumoniae — всего для 31,8% штаммов. Гентамицин активен только в отношении E. cloacae (87,5%), и только для половины штаммов прочих патогенов ГВЗ. Тобрамицин имеет низкую активность для всех исследуемых микробов.
Анализ активности цефалоспоринов в 2007 г. в отношении энтеробактерий, являющихся основными патогенами при ГВЗ кожи и мягких тканей, показал существенное уменьшение доли штаммов, чувствительных к препаратам этого класса антибиотиков (табл. 2). Наибольшую активность проявляют цефтазидим (49,2% — 82,5% чувствительных штаммов) и цефепим (66,7% — 81,6% чувствительных штаммов). Наиболее активны цефалоспорины для штаммов E. coli, а наименьшую активность проявляют в отношении K. pneumoniae/pneumoniae.
Активность наиболее часто используемого представителя фторхинолонов - ципро-флоксацина - в отношении основных видов энтеробактерий, выделяемых при ГВЗ кожи и мягких тканей довольно низка. Он активен в отношении чуть более половины штаммов P. mirabilis, E. coli и E. cloacae и менее половины штаммов K. pneumoniae/pneumonia.
В 2007 г. чувствительность представителей сем. Enterobacteriaceae к карбапенемам (имипенем и меропенем) исследована для 34 штаммов K. pneumoniae/pneumoniae, 24
штаммов E. coli, 18 штаммов P. mirabilis и 6 штаммов E. cloacae. Культур с промежуточ-
ной чувствительностью и устойчивых к кар-бапенемам не найдено.
Учитывая многообразие резервуаров госпитальной инфекции, предотвратить контаминацию кожных покровов и слизистых пациента внутрибольничными патогенами в настоящий момент не представляется возможным. В одном из гнойно-септических центров РФ исследование микрофлоры кожи пациентов через 24-48 часов после госпитализации выявило ассоциации представителей внутрибольничной микрофлоры. Среди них на грамотрицательные палочки приходилось 33%, в том числе 19,5% на энтеробактерии и 13,5% на P. aeruginosa. Исследование на но-сительство госпитальных штаммов у медицинского персонала выявило значительное количество грамотрицательных бактерий в микробиоценозе кожи (17%) [9]. Уровень устойчивости внутрибольничных патогенов к антибиотикам нарастает повсеместно. Развитие инфекции после контаминации пациента госпитальной микрофлорой весьма опасно. Ограничение распространения устойчивых штаммов возможно с использованием комплекса мероприятий. Одной из целого ряда задач является рациональное использование антибиотиков, грамотное и адекватное их применение на основании данных локального микробиологического мониторинга и результатов индивидуального бактериологического обследования.
На основании данных локального мониторинга антибиотикорезистентности приоритетных патогенов ГВЗ кожи и мягких тканей среди энтеробактерий в отделении гнойной хирургии многопрофильной больницы выявлено:
1. Среди энтеробактерий, лидирующих по частоте встречаемости при ГВЗ, отмечается общая тенденция нарастания количества нечувствительных (НЧ) штаммов.
2. K. pneumoniae/pneumoniae и P. mirabi-lis являются наиболее антибиотикорезистентными внутрибольничными патогенами.
3. Наиболее активными антибактериальными препаратами в отношении энтеробактерий, изолируемых при ГВЗ, являются амика-цин, цефтазидим и цефепим.
4. Ципрофлоксацин не может являться препаратом выбора при эмпирическом назначении антибиотиков.
