CC BY
38
Том 153, кн. 1
Естественные науки
2011
УДК 577.15.024
АДСОРБЦИЯ КОНСТИТУТИВНОЙ АСПАРАГИНОВОЙ ПРОТЕИНАЗЫ Candida albicans НА НИТРОЦЕЛЛЮЛОЗНОЙ МЕМБРАНЕ
М.П. Кутырева, А.Р. Мухаметзянова, Н.А. Улахович, А.А. Иванова, Н.И. Глушко
Аннотация
Оценена сорбционная способность протеиназ, выделенных из трех штаммов грибкового аллергена Candida albicans, с различной чувствительностью к антимикотиче-скому препарату «Флуконазол» (протеиназа контрольного штамма - SAPM, штамма, чувствительного к «Флуконазол», - SAP4i), штамма, не чувствительного к «Флуконазол», -SAPh/чф). Изучена физическая адсорбция и специфическая хемосорбция конститутивных протеиназ Candida albicans на нитроцеллюлозной мембране. Методом Скэтчарда определены константы связывания и стехиометрия в системе [секреторная аспарагиновая протеиназа SAP Candida albicans - сывороточный альбумин человека]. Характер полученных графиков Скэтчарда говорит о наличии одного специфического участка при взаимодействии хемосорбированных SAPM и SAP^ с иммобилизованным человеческим сывороточным альбумином и двух специфических участков связывания субстрата при сорбции SAP^®.. Значения констант связывания протеиназы - иммобилизованного человеческого сывороточного альбумина составили КА = (12.86 ± 0.01) 109 моль1 для SAPM; КА = (19.78 ± 0.05) 1010 моль-1 для SAP,®.; КА = (13.35 ± 0.05) 1011 моль-1 и КПА = (3.26 ± 0.07) 1010 моль-1 для SAPh/h®.
Ключевые слова: секреторная аспарагиновая протеиназа Candida albicans, сорбция, адгезия, константы аффинности.
Введение
Знание сорбционной способности физиологически активных соединений является одной из актуальных задач современных научно-практических исследований. Изучение механизма сорбции и свойств сорбированных биосоединений позволяет смоделировать их поведение in vitro и определить способы регуляции их деятельности.
Объектом исследований является система протеиназ Candida albicans (C. albicans), обладающая широкой субстратной специфичностью и многофункциональностью. Высокая патогенная активность грибкового аллергена C. albicans обусловлена количеством и многообразием функций вырабатываемых им секреторных аспарагиновых протеиназ (SAP C. alb) [1]. Система таких протеиназ неразрывно связана с иммунитетом и в настоящее время включает в себя десять изоферментов, обладающих различными функциями и определяющих локализацию и тяжесть кандидаинфекции [1-3]. Объектами исследований послужили индуцируемые SAP C. alb. (SAP1-3), проявляющие антигенные свойства,
и коститутивные SAP C. alb. (SAP4-6), обладающие преимущественно сорбцион-ными функциями и являющиеся необходимыми для последующей секреции и функционирования протеиназ первой группы. Вся система протеиназ C. albicans в современных источниках представлена только клиническими и биологическими показателями. Определено, что их функции включают не только простую роль усвоения молекул для насыщения азотом, а также сотрудничество с главной тканевой инвазией (вторжением) путем разрушения или деформации клеточных мембран, деградации поверхностных молекул, усиления адгезии клеток C. albicans, а следовательно, разрушения клеток и молекул иммунной системы, способных противостоять микробной атаке [1]. Вся система протеи-наз C. albicans относится к классу аспарагиновых протеиназ, активный центр которых образован двумя каталитически активными остатками аспарагиновой кислоты [4].
Адгезия и последующая сорбция C. albicans считаются предпосылками развития кандидоза. Сорбционные способности различных штаммов C. albicans соотносятся между собой так же, как их патогенные свойства [5]. Однако отсутствует общепризнанная модель для изучения адгезивных и сорбционных свойств гриба.
Для конститутивных секреторных аспарагиновых протеиназ (SAP4-6) описаны только методики выделения и клиническая картина воздействия на организм [6]. Они обеспечивают адсорбцию SAP к клеточной мембране и являются причиной наиболее опасных системных микозов. Поэтому разработка общих подходов к оценке параметров сорбции конститутивных протеиназ C. albicans является необходимой задачей для понимания и прогнозирования патогенности культуры С. albicans.
Целью настоящей работы является оценка и сопоставление сорбционной способности конститутивных аспарагиновых протеиназ, выделенных из трех штаммов грибкового аллергена Candida albicans, с различной чувствительностью к антимикотическому препарату «Флуконазол».
1. Экспериментальная часть
Адсорбат. В работе использовали протеиназы C. albicans, выделенные из надосадочной жидкости при выращивании трех штаммов патогенных грибковых микроорганизмов C. albicans: музейного, чувствительного к препарату «Флуконазол» и нечувствительного к препарату «Флуконазол», - по оригинальной методике, разработанной в лаборатории по грибковых аллергенов Казанского НИИ эпидемиологии микробиологии [6-9]. Исходные концентрации составили для SAPм сsap = 9.93-10-12 моль/л, SAPчФ Csap = 9.93-10-12 моль/л и SAPн/чФ cSAP = 3.97-10-13 моль/л. Молекулярную массу выделяемых из трех штаммов Candida albicans ферментов контролировали методом электрофореза в присутствии Ds-Na. Для SAPМ молекулярная масса равна 42.8 кДа, для SAP^ - 42.4 кДа, для SAPK/^ - 45.2 кДа.
Адсорбент. Использовали мембрану на основе нитрата целлюлозы. Для ее приготовления 0.05 г нитроцеллюлозы растворяли в смеси органических растворителей - этилацетата (1.2 мл) и толуола (0.75 мл). При изготовлении матриц с включенным субстратом добавляли 0.8 мл человеческого сывороточного
альбумина (ЧСА) (сЧСА в матрице - 0.0027 г/мл). После перемешивания добавляли 0.06 мл глутарового альдегида (25%, марки Reanal) и затем 2-3 капли гек-сана в качестве коагулянта. После тщательного перемешивания из этой смеси на стеклянной поверхности чашки Петри (d = 90 мм) получали пленку, которую высушивали в потоке воздуха. Готовые пленки хранили в холодильнике при температуре 4 °С.
Определение содержания протеиназы. Проводили спектрофотометрически при X = 278 нм. Этот пик соответствует поглощению белковых соединений. Измерения оптической плотности проводили в кюветах, толщина которых равна 1 см на спектрофотометре HITACHI U-2000.
Адсорбцию фермента изучали в буферных растворах (рН 4.0 для SAPM, рН 4.5 для SAP^ и рН 6 для SAP^^) при 298 °К. В колбы помещали мембраны с S = 7.95 ± 0.005 см и добавляли раствор фермента с концентрацией в диапазоне для SAPM с^ = 0.016-1.666 нг/мл, для SAP^ ^AP = 0.000048-0.0048 нг/мл, для SAPK/^ ^ap = 0.0276-0.53 нг/мл. Параллельно проводили контрольные опыты с растворами фермента в таких же концентрациях, но без адсорбента. Время адсорбции составило 40 мин.
Константы связывания (КА) протеиназы с иммобилизованным ЧСА определяли из зависимости Х/(А0 - Х) от Х (график Скэтчарда), представляющей собой прямую линию с тангенсом угла наклона, равным КА, и пересекающую горизонтальную ось координат в точке, соответствующей В0 [10]:
Ка = Х/(А0 - Х)(В0 - Х) или Х/(А0 - Х) = КаВ0 - КХ, (1)
где Х - равновесная концентрация фермент - субстратного комплекса, А0 - общая концентрация фермента в системе, В0 - рабочая концентрация фермента в системе, Х/(А0 - Х) - отношение концентраций связанного и свободного ферментов.
Концентрацию фермента, оставшуюся в растворе после связывания с иммобилизованным ЧСА, определяли спектрофотометрически.
2. Результаты и их обсуждение
Адсорбция белков может сопровождаться необратимыми изменениями структуры белковых глобул, а адсорбционное равновесие, как правило, устанавливается медленно.
В адсорбционных слоях ферментов, как и в растворах, большую роль играют взаимодействия белок - белок, приводящие к образованию ассоциатов различного состава. Поэтому необходимо учитывать межбелковые взаимодействия в адсорбционном слое. Энергия взаимодействия Гиббса белок - белок всегда оказывается меньше, чем взаимодействия белка с носителем. В этом случае, как при обратимой, так и при необратимой адсорбции ферментов максимальная величина адсорбции отвечает образованию только монослоев глобулярного белка. К особенностям адсорбции белков можно отнести и тот факт, что в некоторых случаях ее изучают в очень разбавленных водных растворов. Содержание белка в растворе не превышает долей процента, а содержание буфера - нескольких процентов [11].
С X 10 8, моль/л С х 10 9, моль/л
Рис. 1. Изотерма адсорбции SAPM (а), 8ЛРн/чФ и 8ЛРчФ. (б) на нитроцеллюлозной мембране
При построении изотерм адсорбции ферментов (SAPM, SAP^, и SAPK/^) проводили их накопление на нитроцеллюлозной мембране и мембране с включенным человеческим сывороточным альбумином (ЧСА) из растворов фермента в диапазоне концентраций для SAPM cSAP = 0.016-1.666 нг/мл, для SAP^ cSAP = 0.000048-0.0048 нг/мл, для SAP^ cSAP = 0.0276-0.53 нг/мл. Концентрацию фермента, связавшегося с поверхностью мембраны, определяли по разности рассчитанных по градуировочной кривой зависимости значений концентрации фермента до и после адсорбции для каждой начальной концентрации фермента. Концентрацию исходного раствора каждого фермента увеличивали до тех пор, пока при очередном увеличении концентрации исследованного раствора количество молей фермента, связавшегося с поверхностью мембраны с включенным субстратом, не достигнет предельного значения, обусловленного адсорбционной емкостью мембраны. Это свидетельствует о предельном заполнении возможных мест связывания с реакционными центрами расположенных на поверхности мембраны сорбируемым ферментом.
На рис. 1. представлены изотермы адсорбции SAPM, SAP^ и SAPK/^ на нитроцеллюлозной мембране, которые позволяют судить о физической адсорбции фермента за счет сил межмолекулярного взаимодействия и водородных связей, возникающих между аминокислотными остатками фермента и свободными гидроксо- и нитрогруппами адсорбента (нитроцеллюлозы).
В случае адсорбции SAPM, SAP^ и SAP^^ на нитроцеллюлозной мембране с включенным ЧСА (рис. 2), который и является одним из субстратов для данного фермента, происходит хемосорбция, обусловленная образованием специфического фермент-субстратного комплекса протеиназа-альбумин на поверхности адсорбента.
Специфическую ориентацию фермента при сорбции на мембрану с иммобилизованным ЧСА дополняет возможность электростатического взаимодействия между ферментом и субстратом. Согласно результатам перекрестного им-муноэлектрофореза и электрофореза в натрийдодецилсульфат полиакриламид-ном геле протеиназа Candida определена как гликопротеид Candida albicans, имеющий суммарный отрицательный заряд [12]. В данном случае осуществляется дополнительная ориентация протеиназы к катионным группировкам субстрата, расположенным на поверхности адсорбента.
14 12 10
2 8
1 6 О
Я 4
а
2 0
2 3 4 5 С X 10-8, моль/л
SAP,
НчФ
4 6 8 10
С X 10-8, моль/л
Рис. 2. Изотерма адсорбции SAPM (а), SAP^^ и SAP^ (б) на нитроцеллюлозной мембране с включенным ЧСА
16 -
. 14 -
Ч
JS 12 "и
s 10 н
о я и
jS 4i
И
Ж
SAPm
SAP™
SAP„
I I сорбция на НЦ Г I сорбция на НЦ + ЧСА
Рис. 3. Величины предельной адсорбции для протеаз SAPM, SAPчФ и SAPн/чФ
Все полученные изотермы адсорбции подчиняются уравнению Ленгмюра для сорбции различных веществ из растворов на твердую однородную поверхность. Величины предельной адсорбции для протеиназ SAPM, SAP^ и SAP^o представлены на рис. 3.
Для оценки специфической хемосорбции протеиназ C. albicans методом Скэтчарда определены константы связывания и стехиометрия [SAP C. alb. -ЧСА]. Следует отметить, что способ Скэтчарда в применении к фермент-субстратным системам оказывается особенно полезным, так как позволяет определять константы специфического связывания с несколькими участками макромолекулы фермента [13].
Характер графиков Скэтчарда позволяет оценить количество участков специфического связывания или однородность ферментативной фракции. Концентрацию связанной с иммобилизованным ЧСА протеиназы при постоянной концентрации субстрата в матрице находили по разности между общей концентрации фермента и оставшейся в растворе после образования фермент-субстратного комплекса. Полученные данные использованы для построения графиков в координатах Скэтчарда (рис. 4-6).
Характер полученных графиков Скэтчарда говорит о наличии одного специфического участка при взаимодействии хемосорбированных SAPM и SAP^ с иммобилизованным ЧСА и двух специфических участков связывания субстрата
SAP^o
18
8 -
2
0
0.750.700.650.600.55 0.500.450.40
0.6 0.8 1.0 1.2 1.4
Сх X 10-11, моль/л
1.6
1.8
2.0
Рис. 4. График Скэтчарда для нахождения констант связывания фермент-субстратного комплекса (Сзар = 9.93-1012 моль/л, рН 4.0)
7Т 6" о
-1 5-д
^ 4
31 & 21 0
0.3
0.4
0.8
0.9
0.5 0.6 0.7
Сх X 10-14, моль/л
Рис. 5. График Скэтчарда для нахождения констант связывания фермент-субстратного комплекса (Сзар = 9.93-1012 моль/л, рН 4.5)
3 4 5 6 7 8
С$ X 10-13, моль/л
Рис. 6. График Скэтчарда для нахождения констант связывания фермент-субстратного комплекса (Сзар = 3.97-10-13 моль/л, рН 6.0)
при сорбции ЗАРн/чФ. Рассчитанные по графикам Скэтчарда значения констант связывания протеиназы - иммобилизованный ЧСА составили КА = (12.86 ± ± 0.01)-109 моль-1 для ЗАРм; Ка = (19,78 ± 0,05)-1010 моль-1 для ЗАРчф; К[а = = (13.35 ± 0.05)-1011 моль-1 и К1\ = (3.26 ± 0.07)-1010 моль-1 для ЗАРн/чф. Следует отметить, что найденные нами значения констант связывания для ЗАРм и ЗАРнчФ имеют высокие значения, что указывает на прочность связывания фермента с иммобилизованным субстратом.
Интерес представляют результаты по сорбции протеиназ C. albicans с различной чувствительностью к антимикотическому препарату «Флуконазол». При обработке патогенного штамма C. albicans малыми дозами фармпрепарата, вероятно, происходит модификация как самого штамма, так и выделяемой им протеиназы SAPK/^ вследствие включения в структуру фермента триазольного фрагмента «Флуконазола» [14]. Данный эффект сопровождается прежде всего изменением молекулярной массы выделенных протеиназ: SAP^ имеет молекулярную массу, равную 42.4 кДа, а 8ЛРн/чФ - 45.2 кДа. Модификация фермента триазольной группировки способствует усилению гидрофобных взаимодействий адсорбата с полимерной нитроцеллюлозной мембраной при физической сорбции и приводит к возникновению дополнительных участков взаимодействия с иммобилизованным субстратом, увеличивая сорбционные возможности фермента при специфической хемосрбции протеиназы C. albicans с различной чувствительностью к «Флуконазолу». В результате модификации «Флуконазолом» протеиназа C. albicans приобретает сорбционные способности подобные и даже превосходящие возможности SAPM. Последняя обладает максимальной патогенностью и является контрольным ферментом в данном исследовании.
4. Выводы
Предложена методика оценки сорбционной способности протеиназ C. albicans на нитроцеллюлозных мембранах. Достаточно простой и экономичный способ получения адсорбента, возможность иммобилизации не только сывороточного альбумина, но других субстратов позволяет определять особенности физической адсорбции и хемосорбции протеолитических ферментов Candida на мембранах с постоянными свойствами. Полученные результаты могут быть использованы для оценки влияния различных дозировок фармпрепаратов на сорбцион-ные способности протеиназ Candida, позволяют регулировать механизм их инвазии и миграции в организме, а следовательно, управлять патогенностью грибковой культуры Candida albicans.
Summary
M.P. Kutyreva, A.R. Mukhametzyanova, N.A. Ulakhovich, A.A. Ivanova, N.I. Glushko. Absorption of Aspartyl Proteinases Candida albicans on a Nitrocellulose Membrane.
The absorption of the secretory aspartyl proteinases (SAP) of three samples of Candida albicans with various sensitivity to antimycotic drug "Fluconazole" (control - SAPM, sensitive to Fluconazole - SAPsF, and nonsensitive to Fluconazole - SAPn/sF) was estimated. Physical adsorption and chemical adsorption of Candida albicans proteinases on a nitrocellulose membrane were studied. Using Scatchard method, the affinity and stoichiometry constants in system [SAP Candida albicans - human serum albumin (HAS)] were determined. The obtained Scatchard plots indicated the presence of one specific binding site at the interaction of chemisorbed SAPM and SAPsF with immobilized HAS, and two specific binding sites of the substrate at the sorption of SAP^. The values of affinity constants were KA = (12.86 ± 0.01)-109 mol-1 for SAPM, ^ = (19.78 ± 0.05)-1010 mol-1 for SAPsF, and R1a = (13.35 ± 0.05)-1011 mol-1 and ^a = (3.26 ± 0.07)-1010 mol-1 for SAP^.
Key words: secretory aspartyl proteinases Candida albicans, sorption, adhesion, affinity constants.
Литература
1. Naglik J.R., Challacombe S.J., Hube B. Candida albicans secreted aspartyl proteinases in virulence and pathogenesis // Microbiol. Mol. Biol. Rev. - 2003. - V. 67, No 3. -P. 400-428.
2. Calderone R.A., Fonzi W.A. Virulence factors of Candida albicans // Trends Microbiol. -2001. - V. 9, No 7. - P. 327-335.
3. Hube B., Naglik J. Candida albicans proteinases: resolving the mystery of a gene family // Microbiol. - 2002. - V. 147, No 8. - P. 1997-2005.
4. Abad-Zapatero C., Goldman R., Muchmore S.W., Hutchins C., Stewart K., Navaza J., Payne C.D., Ray T.L. Structure of a secreted aspartic protease from C. albicans com-plexed with a potent inhibitor: implications for the design of antifungal agents // Protein Sci. - 1996. - V. 5, No 4. - P. 640-652.
5. Sundstrom P. Adhesins in Candida albicans // Curr. Opin. Microbiol. - 1999. - V. 2, No 4. - P.353-357
6. Borg-von Zepelin M., Beggah S., Boggian K., Sanglard D, Monod M. The expression of the secreted aspartyl proteinases Sap4 to Sap6 from Candida albicans in murine macrophages // Mol. Microbiol. - 1998. - V. 28, No 3. - P. 543-554.
7. Smolenski G., Sullivan P.A., Cutfield S.M., Cutfield J.F. Analysis of secreted aspartic proteinases from Candida albicans: purification and characterization of individual Sap1, Sap2 and Sap3 isoenzymes // Microbiol. - 1997. - V. 143, No 2. - P. 349-356.
8. White T.C., Miyasaki S.H., Agabian N. Three distinct secreted aspartyl proteinases in Candida albicans // J. Bacteriol. - 1993. - V. 175, No 19. - P. 6126-6133.
9. Schaller M., Hube B., Ollert M.W., Schäfer W., Borg-von Zepelin M., Thoma-Greber E., Korting H.C. In vivo expression and localization of Candida albicans secreted aspartyl proteinases during oral candidiasis in HIV-infected patients // J. Invest. Dermatol. -1999. - V. 112, No 3. - P. 383-386.
10. Кашкин А.П. Иммуноферментный анализ биологически активных веществ - М.: Мед. пром-сть, 1985. - 43 с
11. Атякшева Л.Ф., Полторак О.М., Чухрай Е.С., Пилипенко О.С. Адсорбционные и каталитические свойства ß-галактозидазы // Журн. физ. химии. - 2002. - Т. 76, № 7. -С. 1314-1317.
12. Macdonald F., Odds F.C. Inducible proteinase of Candida albicans in diagnostic serol-ogy and in the pathogenesis of systemic candidosis // J. Med. Microbiol. - 1980. - V. 13, No 3. - P. 423-435.
13. Маршелл Э. Биофизическая химия: в 2 т. - М.: Мир, 1981. - Т. 1. - 358 с.
14. Сергеев А.Ю. Грибковые инфекции. Руководство для врачей. - М.: ООО «Бином-пресс», 2003. - 440 с.
Поступила в редакцию 23.06.10
Кутырева Марианна Петровна - кандидат химических наук, доцент кафедры неорганической химии Химического института им. А.М. Бутлерова Казанского (Приволжского) федерального университета.
E-mail: [email protected]
Мухаметзянова Алсу Ринатовна - аспирант кафедры неорганической химии Химического института им. А.М. Бутлерова Казанского (Приволжского) федерального университета.
E-mail: [email protected]
Улахович Николай Алексеевич - доктор химических наук, профессор, заведующий кафедрой неорганической химии Химического института им. А.М. Бутлерова Казанского (Приволжского) федерального университета.
Иванова Ангелина Александровна - студент Химического института им. А.М. Бутлерова Казанского (Приволжского) федерального университета.
Глушко Надежда Ивановна - кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории грибковых аллергенов Казанского научно-исследовательского института эпидемиологии и микробиологии.
